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    細胞傳代的方法和注意事項都有哪些?

    發(fā)布時間: 2021-12-08  點擊次數(shù): 4003次

    在細胞傳代時,都應(yīng)該用哪種方法較為合適?或者在做細胞傳代時都應(yīng)注意哪些事項呢?怎樣才能做好細胞傳代讓接下的實驗更順呢?帶著這些疑問,本期小編匯總些細胞傳代的經(jīng)驗分享給大家,希望對大家做細胞傳代時有所幫助。


    1、細胞傳代的方法都有哪些?

    根據(jù)不同的細胞采取不同的方法。貼壁生長的細胞用消化法傳代;部分貼壁生長的細胞用直接吹打即可傳代;懸浮生長的細胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打。


    2、原代培養(yǎng)的第一次傳代應(yīng)注意的問題?

    細胞沒有生長到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前,不要急于傳代;原代培養(yǎng)時細胞多為混雜生長,不同的細胞有不同的消化時間,因此要根據(jù)需要注意觀察及時處理,并根據(jù)不同細胞對胰蛋白酶的耐受時間而分離和純化所需要的細胞;

    吹打細胞時動作要輕巧盡可能減少對細胞的損傷;第一次傳代時細胞接種數(shù)量要多一些,使細胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細胞生存和增值;隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶。


    3、使用胰蛋白酶時加入EDTA的目的?應(yīng)如何處理?

    EDTA作用較胰蛋白酶緩和,主要作用在于能從組織生存環(huán)境中吸取Ca2+、Mg2+,這些離子是維持組織完整的重要因素。但EDTA單獨使用不能使細胞*分散,因而常與胰蛋白酶按不同比例混合使用,效果較好。常用比例為1:1或者2份EDTA:1份胰蛋白酶。EDTA的工作液濃度為0.02%,用不含Ca2+、Mg2+的BSS配置。如果使用EDTA,在終止消化前,需用緩沖液將消化液清除后才能加培養(yǎng)液。第一次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中,保存于 –20 ℃,避免反復(fù)冷凍解凍造成胰蛋白酶的活性降低,并可減少污染的機會。


    4、欲將一般動物細胞離心下來,其離心速率應(yīng)為多少轉(zhuǎn)速?

    欲回收動物細胞,其離心速率一般為800~1000 rpm,5~10 分鐘,過高的轉(zhuǎn)速,將造成細胞死亡。


    5、細胞的接種密度為何?

    依照細胞株基本數(shù)據(jù)上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長的重要原因之一。


    6、細胞交叉污染的可能原因?

    多種細胞系進行維持傳代操作時,各細胞系所需的器材和溶液沒有嚴格分開,往往會使一種細胞被另一種細胞污染。


    以上就是本期的內(nèi)容,更多資訊,歡迎關(guān)注安培生物科技有限公司了解更多技術(shù)與產(chǎn)品資訊。


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